一、容器选择

目前大多数采用真空管进行静脉血样品的采集。真空采血法又称负压采血法，为封闭式采血。采集后的血样品运转方便，特别适用于病房和野外流动采血；同时可避免对医护人员的感染和患者血样品间的交叉感染。各种真空定量采血管根据需要的不同而标记不同颜色的色码，适于不同的检验项目。见下表：

二、不同检测目的的血液标本采集方法

（一）血液寄生虫检验标本采集

疟原虫

1.1EDTA-K₂抗凝静脉血1-2ml，由检验人员涂片。为保证涂片质量，检验科推荐病房直接送EDTA-K₂抗凝静脉血。

1.2取静脉血困难的患者，可采取新鲜的末梢血，薄涂片和厚涂片各3张，立即送检。

1.3在治疗之前和规则发热后期采集标本，即间日虐及三日疟患者应在发作后数小时至10余小时采血，此时，早期滋养体已发育至易于鉴别形态的晚期；恶性疟患者，应在发作20小时左右采血。

（二）出凝血功能检验标本采集

血和抗凝剂比例一定要准确。标本要及时送检，不能久置（2小时之内检测）。抽血应顺利，避免溶血或凝血。病人在抽血前应禁食，避免脂血减低实验的敏感度。

（三）部分生化项目检验

1.口服葡萄糖耐量试验（OGTT）

1.1  试验准备：对试验有影响的药物如烟酸、阿司匹林、β受体阻滞剂、利尿剂、磺胺类等至少应停用1周；试验前3天每天谷类食物应不少于200—300g，否则会出现假阳性；试验前1天禁用烟、酒、茶、咖啡，避免剧烈体力活动；试验前1天禁食10—16小时，不禁水；至少静卧或静坐半小时，避免精神紧张。

1.2  试验程序：早晨7—8时排空膀胱，取空腹血后，在5分钟内饮完准备好的糖水（无水葡萄糖75g，儿童按1.75g/kg体重，总量不超过75g，溶于250—300ml 温开水中）。服完后,分别于隔30分钟、60分钟、120分钟和180分钟取血，含空腹共5次。

1.3  注意事项：由于血糖以每小时5%—15%的速率分解，因此取血后应立即送检。如用75g水解淀粉代替葡萄糖，可避免口服葡萄糖引起的消化系统不适。如用馒头餐（干重100g）代替葡萄糖，因与葡萄糖的吸收速度不同，应在吃完并饮水300—350ml后计时。

2  糖基化血红蛋白（GHb）

EDTA抗凝静脉血2—3ml。

（四）激素检测标本采集

1  泌乳素

因泌乳素睡眠时增高，起床后缓慢下降，应在上午8—10时空腹避免运动，在安静状态下用真空管静脉采血，应尽快分离血清。

2  孕酮

   于末次月经后或妊娠第3月起，上午8：00静脉取血。由于受ACTH分泌节律的影响，除有月经周期变化规律外，还有日内变化规律。应连续多次测定，并应与LH、FSH、E2同时测定以便对结果做出正确解释。

三、血液标本的采集与运输

（一）器材选择

(1) 一般采血可采用质量合格的一次性塑料注射器。从动脉采集血气标本，以采用玻璃注射器为佳，可以减少血液中氧气的弥散。

(2) 采用真空采血管-采血针已成为国际标准，可以有效减少溶血、凝集及采血量不准的差错。

(3) 采集抗凝血液标本时，血标本管采用的抗凝剂的种类及浓度、体积必须正确无误。

（二）采血操作

1．正确选择血标本种类

(1) 大多数检验项目（生化、免疫、凝血、血培养、交叉配血等）采用静脉血标本。 

(2) 血气分析最好采用动脉血标本，也可从动脉化毛细血管采血（如新生儿）。 

(3) 血常规检验（血细胞分析）可以采用静脉血或手指末梢血，但除非静脉抽血确实存在困难者（如：新生儿、幼儿、老人、肥胖者、严重烧伤患者、出血倾向严重的患者、病危患者），或者必须为治疗保留静脉者（如肿瘤化疗患者）可考虑采用手指末梢血外，其他人应采用静脉血。

2．正确选择采血部位

(1) 末梢血标本可从手指采集，采用耳垂末梢血作为血常规检验标本的做法已经废止。新生儿可以从足跟、大趾采集。

(2) 动脉血标本常从股动脉、肱动脉、桡动脉采血，新生儿及婴儿可从头皮动脉或脐动脉采血。 

(3) 静脉血标本常从肘前静脉、腕背静脉采血，小儿和新生儿有时从颈静脉和前囟静脉采血。 

(4) 禁止从输液三通管采血（输液成份回流、输液管内残留输液成份都将极大地影响检验结果）。

3．尽量避免输液时采血

(1) 一般应在输液结束30分钟以后再采血。 

(2) 抢救过程中必须一边输液一边采血时，应避免从正在输液的肢体上采血，应避免输液成份混入血液标本。

(3) 输液时采血应当遵从“远端原则”： 

� 选择在输液的对侧肢体或无输液的其他肢体（如足部）静脉采血。

� 在四肢静脉都输液时，可以选择在输液静脉的远心端（静脉血流的上游）采血。

(4) 急诊、抢救过程中在输液的同时采血，应在检验申请单上注明。 

4．合理使用止血带

(1) 止血带不应扎得太紧，使用时间应尽量缩短。抽血时，见到回血应立即松开止血带，减少血行阻滞时间（也不应鼓励被抽血者长时间、用力攥拳）。 

(2) 血脂项目、出凝血项目、血常规项目抽血时止血带使用应限定在1分钟以内。 

(3) 止血带束缚太紧、时间过长（如超过3分钟），会造成血行阻滞时间过长，因溶血、血小板激活、纤溶系统激活等原因将使以上检验项目的结果产生偏差，甚至诱导错误诊治。 

(4) 需要重新采血时，在止血带束缚时间太长的情况下，应当在对侧手臂重新采血。

5．“一针见血”、抽血顺畅

(1) 许多检验项目，尤其是涉及出凝血机能的项目（如血小板计数、出凝血项目等）均要求做到“一针见血”、抽血顺畅。 

(2) “一针见血”、采血顺畅，可以有效防止溶血、减少血管及组织细胞损伤导致血液成份改变对检验结果的影响。溶血造成红细胞内成份的释放、血管损伤导致凝血机制的激活，对很多检验项目将产生明显影响。

6．控制抽血力度

(1) 用注射器抽血应避免大力拉、推针拴，以免血细胞因受过度挤压而增加溶血。 

(2) 抽血时大力抽拉针拴，还易使血液产生气泡。气泡是导致溶血、蛋白酶失活的重要原因之一。 

(3) 从动脉采集血气分析标本，应让血液自动流入针筒，不要用负压抽取血液，以免增加血液中气体挥发及产生溶血。

7．血液标本采集顺序

(1) 注射器采血可以一次采集足量血液，然后立即依如下顺序分装各标本管：血常规、出凝血、生化、免疫。 

(2) 使用配套的真空采血管-采血针时，第一管最好不作为凝血检验标本（最大限度降低血管及组织细胞损伤造成血液成份改变对检验结果的影响，临床医生申请凝血检验项目时最好考虑与血常规或其他生化项目一起采血）。 

(3) 使用配套的真空采血管-采血针时，采血顺序应当是：血培养、不含添加剂的采血管（血清标本管，红色、桔红色或黄色）、凝血标本管（浅蓝色）、其他标本管。 

(4) 采集末梢血标本的顺序应当是：擦去第一滴血，依次采集血小板计数、红细胞计数、血红蛋白测定、白细胞计数等的标本。

8．减少针头导致的溶血

(1) 如果使用注射器抽血，应先卸除针头，再沿试管壁将血液轻缓地注入试管。 

(2) 通过针头将血液推入试管（血液细胞二次通过针头），尤其是用力推送，将增加血液细胞受挤压而破碎的机会，导致溶血。

9．准确控制标本量

(1) 抗凝血液标本的体积必须准确——真空采血管的标签纸上都有体积标志（黑色小方块）；抗凝血液标本的体积误差应控制在5%以内（如2 ml凝血标本管的血液体积误差应不大于0.1 ml）。 

(2) 抗凝血液标本的体积不合要求可能产生的主要影响：血液体积太多—一抗凝剂比例太少，易产生血凝块；血液体积太少——抗凝剂体积相对剩余，血液成分过度稀释，且易使血细胞因渗透压降低而产生变形或溶血，PT和APTT时间将假性延长。

10．尽快与抗凝剂彻底混合

(1) 需要抗凝的血液标本，抽血后应立即将血液注入含抗凝剂的标本管，并使血液与抗凝剂彻底混合，避免血液凝固。 

(2) 真空采血管以颠倒5~8次为标准操作，动作应迅速而轻柔。用力振荡、产生气泡都不可避免产生溶血。 

(3) 如果管中抗凝剂为液体，应当使粘附在管壁、管盖上的抗凝剂能够全部与血液混合。 

(4) 对于出凝血项目、血常规项目、白细胞表面抗原分类检测等项目，血液标本出现凝固（即使少量细胞凝集）均为不合格。

（三）血液标本保存

1．血液标本的保存要求

(1) 采血后应将标本管直立、静置，避免振荡、摔落。 

(2) 所有标本最好都采用有盖容器盛放，防止灰尘、杂物混入，减少水分、气体蒸发，避免标本溅洒、污染。 

(3) 标本应保存于荫凉处，避免阳光直射。某些检验项目要求避光保存血液标本。 

(4) 标本一般应室温保存，避免过高或过低温度影响。 

(5) 特定项目的血液标本需要低温保存（如血气标本应将封闭的血液立即冷冻至4℃然后送检）。 

(6) 血液标本（全血或血清、血浆）低温保存，应当在检验人员指导下进行。

2．血液标本应立即送检

(1) 血液标本不应在临床科室保留，应尽可能立即送往检验科室。 

(2) 检验人员应根据不同检验项目的要求及时处理标本（立即检验、低温保存、分离血清后低温或常温保存等）。

3．血液标本的有效检验时限

(1) 血气分析——必须立即送检，应当在30分钟内完成检验。 

(2) 凝血因子、细胞因子及激素检验——必须立即送检，即刻检测或冻存标本（不适合采用早晨统一采血、统一送检的方法）。条件具备时，应在实验室采血。 

(3) 凝血项目、电解质项目、肝功及多数血液酶类生化项目——应尽快送检，在2小时内检验。 

(4) 血常规项目——应在4小时内完成检验。 

(5) 血培养项目——应在采血后尽快放入35℃培养箱中，超过2小时可能降低微生物培养的阳性率。 

(6) 多数抗原-抗体检测项目——全血室温（4℃为佳）可保存24小时，或分离血清-20℃保存。 

(7) 在环境温度超过30℃的条件下，所有标本都应尽快送往检验科室。 

(8) 有些临床科室早晨抽血时间太早，至送检时标本已室温放置超过2小时，标本因细胞代谢、溶血、蒸发等原因造成许多项目的结果偏差，如：钾、乳酸脱氢酶、谷丙转氨酶、谷草转氨酶、血红蛋白、酸性磷酸酶等升高，钠、血糖等降低。

检验科建议：住院病房早晨抽血时间应控制在6：30以后，标本应在8：00左右送至检验科。

4．血培养标本的特殊要求

(1) 确保无菌采血，严防标本被污染。 

(2) 血培养瓶接种的血液量一般为：成人10 ml，儿童4 ml，幼儿1~2 ml。接种的血液过多易引起假阳性。 

(3) 作厌氧培养的血液标本，应避免接触空气，立即注入专用厌氧培养瓶内。 

(4) 如果同时作厌氧培养和需氧培养，应先将血标本接种厌氧培养瓶，然后再接种需氧培养瓶。

（四）血液标本运送

(1) 标本应从采集地点直接送往检验科室，不应在其他地点放置。 

(2) 以上血液采集、保存过程对标本质量的要求应当得到满足。必须避免剧烈振荡、血液溅洒、光线照射、异物混入等情况的发生。 

(3) 交叉配血的受血者血液样本，必须由临床医护人员或专职运送人员直接送往输血科（血库）。禁止其他人员（包括受血者家属）执行血样运送任务。 

(4) 外送检验标本应当接受检验人员对标本种类（全血、血清或血浆）、标本容器、生物防护要求以及运送保存温度等方面的指导。

（5）所有的血液标本必须使用密封完好的玻璃试管封闭运输（使用专用标本运输盒）。

（6）需及时送检的标本，要按规定时间送检。

（7）使用合格的标本运送箱，加盖封闭放置标本及运送，符合生物安全性要求。

（8）应根据不同的检查项目将标本分开放置于标本箱内，血、尿、痰标本分开放置。

（9）送检人员必须佩戴防护性手套

（10）送检人员必须经过检验科专人培训和考核。

（五）、其他

1．正确处理不合格标本

(1) 检验科室在核收送检标本时，对不合格检验标本应当拒收。

(2) 临床科室在证实标本不合格之后应当重新采集标本送检。

2．标本溅洒事故的处理

(1) 从标本管溅洒出来的血液标本不能再放回标本管作为标本送检。 

(2) 严禁将同一个待检者含不同抗凝剂的血液标本进行混合，严禁将不同待检者的血液标本进行混合。 

(3) 如果发生标本溅洒事故，应当立即对被污染物（体表、衣物、台面、地面等）进行有效的消毒处理。

（六） 血液样品的拒收标准

在下列情况下实验室有权拒收样品,拒收样品应及时登记在《样品拒收及处理记录本》中，并通知相关责任人。

（1） 检验申请的内容与样品容器或标本不一致，条码污染或不清晰。

（2） 血液样品在常温下放置超过8小时送检。

（3） 样品量不符合标准。

（4） 容器有破裂现象，样品外溅等。

（5） 抗凝样品出现血凝块。

（6） 溶血、严重脂血影响检测的样品等。

（7） 使用错误采血管的样品。

（七）检验后样品处理 

血液样品检测完成后4℃冰箱保存1周(凝血检测样品室温下保存至次日晨)，填写《标本保存记录表》，然后统一按照医疗废弃物处理要求由医院统一收集处理并登记于《医疗废物记录表》。

四、尿液标本采集

（一）尿液的收集

1．容器  清洁、干燥，密封性能好、具较大口径，便于留取尿液的一次性尿杯。容器周围应标有病人的姓名、住院号、科室、床号，并填写标本留取的时间。

2．标本留取的时间和方法

（1） 首次晨尿：即留取清晨第一次尿，因较浓缩，条件恒定，便于对比，适合住院病人，能真实地反映肾脏病情况。

（2） 随机尿：不为条件所限，适于门诊，急诊病人，但受多种因素的影响，有形成分的浓度较低。

（3） 午后尿：午餐后2h尿中尿胆原和糖含量高，适于这两种成分的检验，可提高阳性检出率。

（4） 24h尿：适于代谢产物24h定量测定，如尿蛋白，糖，钠，钾，氯，钙，尿酸等。应准确的收集24h尿液并测尿量，从混匀尿液中留取100～200ml送检。收集24h尿液应根据检验目的加入适当防腐剂。24h尿液沉渣还可用于找抗酸杆菌。

（5） 特殊体位采集尿标本：如分别采集直立或运动后尿标本与平卧8h后尿标本，对体位性蛋白尿，运动性血尿诊断有帮助。

（6） 清洁尿(中段尿，导尿，膀胱穿刺尿等)：适于细菌培养，要求洗涤并消外阴后用消毒灭菌溶器无菌收集尿液，应注意无菌操作。

（二）尿液采集注意事项

1 应用清洁，有盖，干燥，最好为一次性容器，防止日照与污染。

2 采集尿液量：尿常规与一般定性检查留取尿液约100ml。

3 尿标本要新鲜，留取后立即送检。放置4h以上尿中成分可发生变化，如红细胞，白细胞溶解等。

4 尿标本要防止月经血，白带，精液，前列腺液，粪便，烟灰等异物混入.一般检查留取晨起第一次清洁中段尿，作细菌培养者应先做尿道口局部消毒处理并注意无菌操作.
   5 尿胆原等化学物质因光分解或氧化，需要避光.

（三）尿液标本的保存
   尿液排出后即逐渐发生物理和化学变化，因此，尿标本收集后应立即检查，不能及时检查或需留取大量标本时，应适当防腐.常用方法有：
1 冷藏：尿标本放4℃冰箱可保存6～8h。

2 化学防腐：

（1）甲醛（400g/L）：5ml/L尿，用于管型和细胞防腐，不适于尿糖等化学成分检查。

（2）甲苯：用于尿酸，蛋白，钠，钾，氯，钙，磷等防腐，按5ml/L尿加入。

（3）浓盐酸：用于尿内17-羟皮质醇和17-酮皮质醇，儿茶酚胺等测定时作防腐剂，按1ml/L尿加入。

（四）实验室拒收尿液样品的标准 

在下列情况下实验室有权拒收样品：

（1）检验申请的内容与样品容器或标本不一致。

（2) 尿液采集后送检时间超过规定时间。

(3) 常规尿液检查的样品量少于10ml。

(4) 容器被样品污染，条码污染或不清晰。

（五）检验后样品的处理 

检验后的样品不保存，经消毒处理后倒入下水道；尿杯和塑料试管置黄色医疗垃圾袋内，由医院专人统一收集处理。

五、粪便标本采集及注意事项

（一）样本采集

1 采集待检粪便时，通常采集自然、新鲜排出的粪便，盛于洁净、干燥、无吸水性的容器中。做细菌培养时，粪便应收集于无菌容器内。

2 标本收集后及时送检验科，要求采集后1小时内检查完毕，避免细胞分解和病原菌的死亡。

3 应取粘液，脓血等病理部分，日本血吸虫孵化毛蚴时至少留取30g粪便尽快处理。

4 各种检查用的粪便标本中不得混有尿液，消毒剂及污水等。

5 留作隐血试验的标本，检查前3日禁食肉类及动物血并禁服铁剂及维生素C。

6 检查阿米巴滋养体时标本收集后立即送到检验科，立即检查。寒冷季节标本传送与检查时应保温。

（二）粪便样品的保存

粪便样品采集后应尽快送检，一般在2小时内及时送检，最好在30分钟之内完成检查，如不能及时送检或分析，必须采取保存措施，冰箱内保存(潜血检测4℃环境)。

（三） 实验室拒收粪便样品的标准

1 检验申请内容与粪便样品容器标识不一致。

2 粪便常规检查样品送检时间超过规定时间。

3 送检的容器被样品污染或条码不清晰。

（四） 检测过样品的处理

检测过的粪便样品不保存，置黄色医疗垃圾袋内，由医院专人统一收集处理。

六、痰液标本的采集

（一）痰液标本采集方法：自然咯痰法，气管穿刺吸取法，经支气管镜抽吸法等。

（二）操作：

1 一般检查以清晨用清水漱口后咯出气管深处的第一口痰为宜。

2 细菌培养，先用灭菌水漱口，咳痰后置无菌容器及时送检，以免细菌和细胞自溶。

3 作漂浮或浓集结核杆菌检查时，需留12～24h痰液。

4 对于小儿，可用消毒棉拭刺激喉部引起咳嗽反射，用棉拭子刮取标本。

5 作24h痰量和分层检查时应咯痰于无色广口瓶中，可加少许石炭酸以防腐。

6 作细胞学检查时，嘱病人用力将喉内的前两口痰咳出弃去，然后咳出至少5～6口痰(总量约5ml左右)送检。

七、阴道分泌物标本采集

（一）操作：妇科医生用消毒棉签自阴道后穹窿处取少许分泌物置于已准备好的生理盐水试管中立即送检。

（二）注意：

1 湿涂片检查阴道毛滴虫时标本应保温。

2 取标本前三天内避免性生活，在各种治疗与检查之前采取标本，不能阴道冲洗和上药。

八、浆膜腔液标本采集

（一）操作：在无菌条件下由医生行关节腔穿刺术采集标本，采取量由检验目的而定，以30-50ml为宜。立即送检。

（二）注意要点：

1.浆膜腔积液包括胸水、腹水、心包液、关节液及鞘膜液等。

2.胸水及腹水抽取10ml,心包液，关节液等抽取2-5ml，将所得穿刺液盛于加有抗凝剂的试管中，立即送检或置4℃冰箱保存。

3.用于细胞学检查时：要求至少一管抗凝（抗凝剂为100g/L乙二胺四乙酸二钾（EDTA-K₂盐），每0.1ml可抗凝6ml浆膜腔积液），另一管不抗凝用于观察积液的凝固性。

4. 化学检查标本宜用肝素抗凝，细菌培养无菌管收集。

九、前列腺标本的采集

（一）操作：采集方法常为按摩法：嘱受检者排出尿液后，肛指自上而下按摩前列腺左右两叶各2-3次，或自前列腺两侧向中线各按压2-3次，然后由前列腺的中线向肛门口按压2-3次，再挤压会阴部的尿道，便有前列腺液自尿道口流出。弃去第一滴，用干燥洁净的玻片留取标本。

（二）注意要点：

1.细菌培养：用无菌试管收集，立即送检。

2.涂片检查：置洁净载物玻片上，立即送检，以防干涸。

十、精液标本的采集

1 嘱患者禁止合房七天，留取精液。

2 直接用干燥，防漏，洁净的容器留取。容器不宜过大，以免沾留太多。

3 留取后半小时内保温送检，冬天最好放在内衣口袋里。

4 标本采集次数：精子生成的日间变化较大，因此，对于少精症患者不能仅凭1次检查结果诊断。一般间隔1～2周再检查1次，连续检查2～3次后再作判断。

5 禁止用避孕套工具留取，影响活动力。

6 必要时在医生指导下留取。

十一、脑脊液标本采集

（一）操作：

1 由临床医师进行采集。

2 通常采用腰椎穿刺，较小儿童也可采用小脑延髓池穿刺，穿刺皮肤消毒必须彻底。

3 一般分3管收集：第一管用作细菌试验，第二管用作化学检查，第三管用作常规检验，顺序不可错乱。

4 常规检测应留取2ml立即送检。

（二）注意事项：

当颅内感染，出血或肿瘤，颅内压升高，穿刺有一定的危险性；必要时可先静脉给予适量的渗透性利尿剂（如20%甘露醇），降低颅内压后穿刺并减少取材量，以免诱发脑疝。

十二、细菌培养标本的采集与运输

（一）细菌标本采集的基本原则

1 早期采集 原则上应选择在使用抗菌素前或至少停用抗生素3-5天后进行采集，最好在病程早期，急性期或症状典型时，对已用药而病情不允许停药的患者，应在下次疗程用药前采集。

2 无菌采集 应严格按照无菌操作技术进行采集，最大程度地减少外源性污染。

3 选择适宜的时间采集 例如清晨的痰和尿液含菌量较大，怀疑菌血症应在畏寒，寒颤或体温上升阶段采集标本，可提高培养的阳性率，并根据病程的不同选择适宜的标本。

4 标本的采集应适量  血液标本与培养基的比例以1：10为宜，采血容量成人以每瓶8-10ml为宜，婴幼儿采血1-2 ml，儿童采血3-5ml，骨髓的采集量一般为1-2ml。

5 标本采集的频率  对于尿和痰标本最好留取三次以上，以增加结果的可信度;对于菌血症患者例如亚急性心内膜炎应多次多部位采血，以提高阳性率。

6 根据标本不同使用不同的无菌容器  盛标本的容器必须经消毒灭菌处理(不能使用消毒剂或防腐剂处理)。

7 根据目的菌的特性用不同的方法采集。

8 安全采集：收集标本必须带手套，穿工作服，必要时戴口罩和护目镜;不可将带针头的注射器直接送入实验室，采集标本的容器不得外漏。

（二）细菌标本的运输

1.所有标本应立即转送，最好在2h内送达实验室。

2.所有标本都应使用密封的容器（涂片除外），做培养鉴定的要用无菌密封的容器。

3.对环境敏感的细菌(如志贺菌，淋球菌，脑膜炎奈氏菌，流感嗜血杆菌对冷敏感)，送检途中应注意标本的保温；来自脑脊液，生殖器，眼或内耳等的标本切忌冷冻。

4.厌氧标本采取后立即送检，避免正常厌氧菌群的污染以及与氧的接触致厌氧菌死亡，措施有：

（1）用无菌注射器送检：抽取标本后只要排尽空气，并将针头插入无菌橡皮塞中。

（2）用无氧小瓶送检：用真空泵抽除气体，加入一定含有脑心浸液的厌氧菌增菌液，并充入含有氮气和二氧化碳的混合气体，标本注入瓶内立即送检。

（3）标本充盈法：将标本充满容器，加盖后立即送检。

5.使用合格的标本运送箱，加盖封闭放置标本及运送，符合生物安全性要求。

6.应根据不同的检查项目将标本分开放置于标本箱内，血、尿、痰标本分开放置。

7.送检人员必须佩戴防护性手套，高传染性标本还应佩戴防护口罩、帽子

8.送检人员必须经过检验科专人培训和考核。

（三）细菌常见标本的采集

1 血标本的采集及注意事项：

（1）采血时间：尽量在使用抗菌药之前进行；可根据病程和病情在不同时间采集标本；对间歇性寒战或发热，应在寒战或体温高峰到来之前0.5～1h采集血液，或于寒战或发烧后1h进行。

（2）采血的部位和频率：应根据病程的不同多次多部位采集，通常在24h内采集2～3份血培养，以提高阳性率。

（3）采血量：血液和培养基之比通常为 1：5～1：10，采血量成人以8～10ml为宜，儿童和婴幼儿分别为3～5ml和1～2ml不等。

（4）标本采集时应严格无菌操作，避免杂菌污染。

（5）采集标本后应立即送检，否则需要室温保存或置35℃～37℃孵箱中。切勿冷藏。

（6）做厌氧菌培养应严防注射器的空气进入厌氧培养瓶。

（7）根据菌血症和脓毒症所引起的疾病，可采集相应原发灶的标本同时培养。

2 痰标本的采集及注意事项

（1）应在用药前或停药3～5天后留取标本。

（2）晨痰含菌量较高，所以痰标本最好清晨留取。留痰前应充分漱口， 用力咳出深部痰液，以减少口腔正常菌群污染标本。

（3）对于昏迷患者可采用气管插管引流液或气管穿刺法采集。

（4）可通过纤维支气管镜或咽拭子直接采集标本。

（5）合格标本：白细胞>25个/低倍镜视野，鳞状上皮细胞<10/低倍镜视野为合格标本。

3 粪便的采集及注意事项

（1）采集粪便应在使用抗生素前和急性期(3天之内)进行，以提高阳性率。

（2）采用自然排便法或直肠拭子法采集，厌氧培养标本应床边取材，尽量避免与空气接触。

（3）采集新鲜粪便，尽量挑取含脓血，粘液或疑有致病菌的粪便。

（4）立即送检，否则应放入Carry-Blair氏运送培养基内。

4 尿液标本的采集和注意事项

（1）应在使用抗生素前或停用3～5后留取，以防尿液细菌发育受药物影响。

（2）留取标本前应彻底对尿道口周围进行消毒，严防周围皮肤杂菌的污染。

（3）留取晨起中段尿，以提高阳性率。

（4）必要时通过导尿，膀胱穿刺法或肾盂尿采集法进行采集。

（5）留取尿液应用专用的无菌尿杯，并不得含有防腐剂或消毒剂。

（6）留取标本后立即送检(一般在半小时内，不超过1小时)，以免污染。

5 化脓和创伤标本的采集和注意事项

（1）对于开放性感染和已溃破的化脓灶，采集前先用无菌生理盐水冲洗表面污染菌，再用无菌拭子采集脓液及病灶深部的分泌物。

（2）对于闭锁性脓肿应先消毒周围皮肤，经穿刺抽取脓汁及分泌物。

（3）深部脓肿要考虑厌氧菌同时感染的可能，尽可能与空气隔绝。

（4）采集标本应注意脓汁和分泌物的性状，色泽和气味。

（5）不能立即送检的标本(淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌除外)，应放4℃冰箱保存。

6 生殖道分泌物的采集及注意事项

（1）彻底清洗尿道口。

（2）由专业人员按要求采用相应的采集方法采集标本。

（3）标本采集后立即送检，对疑淋病奈瑟菌感染者，标本送检过程应保温。

7 厌氧标本的采集及注意事项

（1）临床厌氧菌感染的指正：

1）感染局部产生气体，肿胀，坏死，皮下有捻发音。

2）有恶臭，呈脓性并含有坏死组织的分泌物应考虑厌氧菌感染，但无恶臭的分泌物不能排除厌氧菌感染。

3）粘膜附近的感染(如口腔，鼻，咽腔，肠道，外阴和阴道)易发生厌氧菌感染。

4）伴有黑色或黄色硫磺样颗粒，在紫外灯下合并红色荧光的分泌物。

5）长期使用氨基糖甙类抗生素治疗无效如链霉素，庆大霉素，卡那霉素等的患者。

6）常规血培养阴性的细菌性心内膜炎，并发脓毒性血栓静脉炎或伴有黄疸的菌血症。

（2）厌氧标本的采集及注意事项
1）肺分泌物和痰标本：在支气管镜下或环甲膜穿刺术取材。

2）脓胸或未溃破的脓肿：局部消毒后用无菌注射器抽取，立即排尽空气，将针头插入橡皮塞中送检。

3）尿：耻骨上缘行膀胱穿刺术下抽取尿液。

4）血液：直接抽取，尽量减少空气进入培养瓶内。

5）窦道，深部脓肿：可通特别采样器采取。

十三、其他体液标本运输

（1）标本应由护工或服务队从临床病区护理部直接送往检验科，不应再其他地点放置。

（2）以上体液采集、保存过程对标本质量的要求应当得到满足。避免光线照射、异物混入等情况的发生。

（3）所有的体液标本必须使用密封完好的容器封闭运输（专用运输盒）。

（4）需及时送检的标本，要按规定送检。

（5）送检人员必须佩戴一次性手套。

（6）送检人员必须经过检验科专人培训和考核。

（7）从标本管溅洒出来的标本不能再放回标本管作为标本送检。

（8）如果发生标本溅洒事故，应当立即对被污染物（体表、衣物、台面、地面等）进行有效的消毒处理，并联系护理部重留。脑脊液、胸腹水等特殊采集的标本，杜绝出现此种现象。